Balık Dokularının saklanması

[aquahell]

Yapılacak çalışmalarda hayvan türleri arasındaki farklılıklar göz önüne alınarak hücrelerin yapısal ve fonksiyonel önemine göre işlemlere yön verilir. Histoloji laboratuarlarında dokuların incelenmek üzere hazırlanması için yapılan gereken işlemler genel olarak yedi aşamadan oluşur. Bunlar;
- Tespit (Fiksasyon)
- Suyunu alma (Dehidratasyon)
- Saydamlaştırma
- Parafinle muamele (Parafinizasyon)
- Blok hazırlama
- Kesit hazırlama ve
- Boyama işlemleridir

Tespit
Histolojik preperasyon için alınacak doku örneğinde özellikle dikkat edilmesi gereken faktörlerden birisi, örneğin alınıp fiksasyona konma sürecidir. Tespit işleminde öncelikli hedef, dokuyu olabildiğince hızlı ve bozmadan sabit hale getirmektir. Tespit işleminde çeşitli amaçlara göre farklı solüsyonlar kullanılır. Rutin olarak en çok kullanılan solüsyon formalin solüsyonudur. İdeal tespit için %10’luk konsantrasyonda kullanılması yeterlidir. Formalin dışında kullanılan diğer bazı solüsyonlar şunlardır:
• %2’lik gluteraldehit solüsyonu
• %70–90 etanol solusyonu
• Bouin solusyonu
• Zenker solüsyonu
Solüsyon seçimi dokunun özelliğine bağlı olarak değişebilir. Örneğin yağ bakımından zengin dokuların tespitinde alkol uygun değildir. İdeal bir tespit için; Dokunun hacminin 10 katı miktarda tespit solüsyonuna gereksinim vardır. Materyalin konulduğu kabın hacminin buna göre belirlenmesi gerekmektedir. Ayrıca, tespit olan dokular sertleşeceklerinden, bunların konulduğu kapların ağız kısımlarının materyalin sertleştikten sonra, parçalanmadan, kolaylıkla çıkarılmasına olanak verecek genişlikte olması gerekir. Materyallerin konulduğu kapların, tespit solüsyonunun buharlaşmasını ve dökülmesini önleyecek şekilde kapaklı olması gerekmektedir. Büyük materyaller solüsyon üzerinde yüzecek şekilde bırakılmamalı, bunların bütün yüzeylerinin solüsyonla temas etmesini sağlamalıdır. Bunun için gerekirse üzerlerine dokuya zarar vermeyecek şekilde ağırlık konularak bekletilmesi gerekmektedir. Bu aşamanın süresinin bir geceden az olmaması gerekmektedir.
Suyunu Alma (Dehidratasyon)
Dokuların mikrotom yardımıyla birkaç mikron kalınlığında kesilebilmesi, dokunun sert olması halinde mümkün olur. Bu amaçla öncelikle doku içindeki suyun alınıp su yerine alkolün geçmesi sağlanmalıdır. Daha sonra alkol alınıp yerine ksilol ve en son olarak ksilol alınıp yerine parafin geçirilir. Her bir basamakta tutma süresi doku türüne ve uygulanacak boyama yöntemine göre değişmektedir. Bu süre 15 dakika ile 1 saat arasındadır.


Saydamlaştırma
Kesit alma öncesi uygulanan ikinci aşama dokudaki alkolü alıp yerine ksilol geçirme işlemidir. Ksilol yağları eritir ve dokuyu saydamlaştırır. Biz çalışmalarımızda balık dokusuna daha uygun olduğunu gördüğümüz creostat adı verilen maddeyi ksilolle karıştırarak bu uygulamayı yapmaktayız. Bu aşamada da süre dokunun özelliğine bağlı olarak değişmektedir.
Parafinizasyon
Bu aşamada dokular kullanılan parafinin özelliğine bağlı olarak 58-65 ºC sıcaklıktaki parafin içinde en az 2 saat bekletilir. Böylece dokulardaki ksilol yerine parafin geçirilir. Kemik örnekleri bu işlemlerden geçirmeden önce içlerindeki kalsiyum alınarak yumuşatılmalıdır. Bu işlem için özel olarak hazırlanmış %5’lik formik asit veya %8‘lik HCL + %10‘luk formik asit karışımı kullanılır. Bu işleme dekalsifikasyon denir.
Blok hazırlama
Sertleştirilen dokuların kesilecek yüzleri alt tarafa gelecek şekilde parafin içine gömülerek bloklar hazırlanır. Hazırlanan bloklar soğuduktan sonra kesilmeye hazır hale gelir.
Kesit hazırlama
İçerisinde doku bulunan parafin blok, mikrotom olarak adlandırılan dilimleyici alete monte edilerek kesilir. Bloktan kesilen kesitler 35–40°C sıcaklıktaki su banyosuna (benmari) atılır ve kesilme esnasında kıvrılan dokunun düzgün bir şekilde yayılması sağlanır. Düzgün doku lam yardımıyla sudan alınır. Lamlar etüvde bekletilir. Bu sırada doku içindeki parafin erir ve akar. Lam üzerinde sadece doku kesiti kalır.
Boyama
Lam üzerine alınan doku kesitinin boyanabilmesi için öncelikle parafinden
kurtarılması gerekmektedir. Bu amaçla preparatlar tüm parafini temizlemek ve dokuyu saydamlaştırmak üzere en az 1,5 saat ksilolde tutulur. Daha sonra absolu alkolden başlamak suretiyle alkol serilerinden geçirilir. Bundan sonra gerekli boyama yöntemleri uygulanır. Boyanmamış parafin kesitlerde çoğu doku elemanı renksizdir. Işık mikroskobu ile histolojik yapıyı ayırt etmek oldukça güçtür. Bu nedenle doku kesitlerinin boyanması gerekir. Boyama, çeşitli hücre ve doku kısımlarının boyaları farklı şekilde tutmaları esasına dayanır. Boyaların çoğu suda, bazıları ise alkol veya asetonda eritilerek hazırlanır. Tek bir boyama yöntemi ya da çoğu zaman birkaç boyama yöntemi bir arada kullanılarak boyama gerçekleştirilir. Histoloji ve patoloji laboratuarlarında rutin olarak genellikle
hematoksilen-eosin birleşik boyama yöntemi kullanılmaktadır. Ama dokunun özelliğine bağlı olarak da farklı boyamalar yapılabilir.
Biz kendi laboratuarımızda bu boyama yönteminin dışında PAS, AZAN, May-Giemsa gibi birleşik boyama yöntemleri de kullanmaktayız. Bu yöntemlerden hangisinin kullanacağına dokunun özelliğine ve araştırılan
doku kesimine bağlı olarak karar verilmektedir. Burada anlatılan işlemler genel olarak yapılan histolojik çalışma prosesi olmakla birlikte balık dokusu üzerinde bazı değişiklikler de içermektedir. Dokunun takibi ve kullanılan boyalar balık dokusuna uygun olarak seçilmelidir. Genellikle kullanılandan farklı olarak balık dokularının boyanmasında kulanılan eosin boyası içeriğinde Ploxine B ve Eosin Y boyaları da bulunmalıdır.
Boyanan örnekler daha sonra entellan adı verilen özel bir madde ile kapatılarak kurumaya bırakılır. Dokulardan alınan kesitler üzerinde uygulanan bu işlemler dizisi neticesinde hazırlanan preparatlar mikroskop altında incelenmeye hazır hale gelmiş olur.
3. Temel Kurallar

 Tüm doku alma işlemleri mutlaka anastezi altına alınmalıdır.
 Hangi dokuların ne miktarda alınacağı önceden belirlenmelidir.
 Doku örnekleri konulacağı kap ya da tüpler önceden hazırlanmalıdır.
 Doku miktarı, grup, doz, süre, ağırlık tüm veriler önceden hazırlanan kayıt formuna yazılmalıdır.
 Doku örneklerin sonunda tüm balıklara ötenazi uygulanmalıdır.
 Tüm çalışmalarda en az sayıda hayvanla (yeterli miktarda) çalışılmalıdır.



kaynak: http://forum.limnoloji.org.tr/

[aquahell]

DOKULARIN TRANSFERİNDE DİKKAT EDİLMESİ GEREKEN HUSUSLAR

 Dokular, % 10’ luk formalin solüsyonuna konularak gönderilir.
 Sıvı materyaller alındıktan sonra bekletilmeden laboratuara ulaştırılır.
 İnce iğne aspirasyonları üzerine yayıldıktan sonra herhangi bir tespit solüsyonuna konmadan havada kurutularak gönderilir.
 Frozen çalışma için doku serum fizyolojikle ıslatılmış cam bez içine konularak gönderilmelidir Herhangi bir tespit solüsyonu içine konulmaz.
 Daha iyi bir klinikopatolojik korelasyon için istem formu eksiksiz doldurulmalıdır.Eğer istem formu yok yada eksik doldurulmuş ise; materyal kabının üzerinde hasta adı yada barkot yok ise; istem formu ile materyal kabı üzerindeki bilgiler uyumsuz ise; tespitsiz yada uygun olmayan koşullarda gönderilmiş ise materyal kabul edilmez;gönderen servise iade edilir.

4.2. MATERYAL SAKLAMA KOŞULLARI

 %10’luk Formalin solüsyonundaki doku, oda sıcaklığında bir ay saklanır. Doku müze için saklanmış ise daha uzun süre saklanır.
 Sıvı materyaller, santifrüj edilerek lam üzerine yayılır ve havada kurutulur. Kalan materyaller, buzdolabında + 4 o C de saklanır.(Saklama süresi, doku saklama süresi ile benzerdir).
 Havada kurutularak gönderilen materyalin tamamı aynı gün içinde işleme alınır.
 Frozen için gönderilen materyal, işleme alındıktan sonra kalan materyal, %10 formalin solüsyonunda takibe alınır.